El ácaro rojo de las palmeras, Raoiella indica Hirst (Acari: Tenuipalpidae) es una plaga importante para el cocotero, la palma dátil y en arecas ornamentales de numerosos países tropicales del hemisferio oriental y occidental.
Esta especie fue descrita en 1924 sobre hojas de cocotero en la India, diseminándose por varios países del hemisferio oriental, donde se incluyen: Pakistán, Mauricio, Egipto, Sudán, Irán, Omán, Israel, Isla Reunión, Arabia Saudita, Emiratos Árabes Unidos, Malasia, Sri Lanka y Filipinas. En el 2004 se informó en Martinica. En esta región se ha dispersado rápidamente, se señala su presencia en Dominica, Guadalupe, San. Martín, Santa Lucía, Trinidad y Tobago, Puerto Rico, Santo Tomás (Islas Vírgenes Estadounidenses), República Dominicana y Jamaica. Recientemente fue informado en la cuenca del Caribe en Martinica, en el 2004. Desde entonces comenzó su expansión por todo el caribe, en el año 2008 invadió Venezuela y la Florida; y en el 2009 se registró en México.
En esta región se ha dispersado rápidamente, y se señala su presencia en Dominica, Guadalupe, San Martín, Santa Lucía, Trinidad y Tobago, Puerto Rico, Santo Tomás (Islas Vírgenes Estadounidenses), República Dominicana y Jamaica.
En el Caribe ha afectado otras especies de plantas que no pertenecen a la familia Arecaceae, tales como Musa spp. (Musaceae), Heliconia rostrata (Heliconaceae), Alpinia purpurata (Zingiberaceae) y Eucayiptus spp. (Myrtaceae).
Es calificada como especie exótica invasora, Raoiella indica (Hirst) fue registrada en Cuba desde el año 2008 en las provincias orientales. Esta especie afecta a plantas de importancia económica como el plátano, los cocoteros y el turismo, debido a que los jardines que rodean los hoteles pueden ser dañados, y sobre todo a la Palma Real, árbol nacional (árbol endémico de nuestra isla); aunque como efecto segundario tiene la destrucción de los habitas y la desaparición de más especies. Motivo por el cual se trabaja en el manejo y control de este organismo para mitigar el impacto del ácaro rojo de las palmeras, utilizando programas de información para los productores y el público en general, como métodos de control biológico.
Mediante estudios que se han realizado en nuestro país se ha determinado que R. indica está presente en todas las provincia de Cuba, de 220 taxones de palmas muestreados, se señalan 72 como hospedantes de R. indica y de ellos, 38 nuevos hallazgos para el país.
Posición taxonómica.
Los ácaros tenuipalpidos o falsos ácaros tetraníquidos están ampliamente distribuidos y son numerosos en las regiones más cálidas del planeta. De la familia Tenuipalpidae se han informado más de 622 especies dentro de 30 géneros. El género Raoiella fue instituido por Hirst en 1924 para designar a R. indica como especie tipo. Su ubicación taxonómica, según Mendonça et al. es la siguiente:
Phyllum: Arthropoda.
Subphyllum: Chelicerata
Clase: Arachnida
Subclase: Acari
Orden: Prostigmata
Superfamilia Tetranychoidea
Familia: Tenuipalpidae Berlese
Subfamilia: Tenuipalpinae Sayed, 1950
Tribu: Tenuipalpini Berlese, 1913
Género: Raoiella Hirst, 1924
Especie: Raoiella indica Hirst, 1924
Esta especie es nombrada comúnmente como: ácaro del coco, ácaro rojo del cocotero, falsa arañuela chata, ácaro rojo de las palmeras, ácaro carmesí y ácaro carmesí de la palma datilera. Rarosiella cocosae Rimando, se considera una sinonimia de R. indica.
Las plantas hospedantes son (2):
Como se puede observar en la Tabla 1 este ácaro prefiere las plantas pertenecientes a la familia Arecaceae, con 13 especies hospedantes, localizadas en diferentes zonas geográficas. Dentro de la familia se destaca el cocotero y la palma datilera, los cuales se han informado en un mayor número de países. Se debe destacar la incidencia que ha tenido en la cuenca del Caribe, donde se ha encontrado en un número importantes de especies de plantas pertenecientes a diferentes familias botánicas.
Tabla 1: Plantas hospedantes del Raoiella indica Hirst (Acari: Tenuipalpidae).
| Nombre Científico | Nombre vulgar | Familia | País | Referencia |
| Aiphanes sp. | Palma de corona | Arecaceae | Santa Lucía | Kane et al. (27) |
| Alpinia purpurata Vieill. ex. Schum. | Jengibre | Zingiberaceae | Santa Lucía | |
| India | Nageshachandra y | |||
| Areca catechu L. | Palma betel | Arecaceae | Channabasavanna (32) | |
| Pakistán | Chaudhri et al. (5) | |||
| Mauricio | Moutia (31) | |||
| Martinica | Fletchmann y Etienne (15) | |||
| Trinidad | Kane et al. (27) | |||
| Areca sp. | Palmera | Arecaceae | India | Pritchard y Baker (35) |
| Caryota mitis Lour | Cola de pescado | Arecaceae | Guadalupe | Peña et al. (33) |
| Cassine transvaalensdis (Borg.) | – | Celastraceae | Santa Lucía | Kane et al. (27) |
| Cocos nucifera L. | Cocotero | Arecaceae | Isla Reunión | Ueckermann (49) |
| Tailandia | Kane et al. (27) | |||
| India | Hirst (19) | |||
| Mauricio | Moutia (31) | |||
| Martinica | Fletchmann y Etienne (15) | |||
| Santa Lucía | Kane et al. (27) | |||
| Dominica | Kane et al. (27) | |||
| Trinidad y Tobago | Anónimo (2) | |||
| Puerto Rico | Rodrigues (43) | |||
| Jamaica | IPPC (23) | |||
| Dictyosperma album (Bory.) | Palma princesa | Arecaceae | Mauricio | Moutia (31) |
| Martinica | Fletchmann y Etienne (15) | |||
| Santa Lucía | Kane et al. (27) | |||
| Dypsis lutescens (H. Wendl.) | Palma areca | Arecaceae | Asia | Welbourn (50) |
| Santa Lucía | Kane et al. (27) | |||
| Etlingera elatior (Jack.) R. M. Smith | – | Zingiberaceae | Guadalupe | Peña et al. (33) |
| Eucayiptus spp. | Eucalipto | Myrtaceae | Santa Lucía | Kane et al. (27) |
| Eucayiptud sp. | Eucalipto | Myrtaceae | Santa Lucía | |
| Heliconia rostrata R. | Heliconia | Heliconaceae | Trinidad y Tobago | Fletchmann y Etienne (15) |
| Guadalupe | Peña et al. (33) | |||
| Licuala grandis H. Wendl. | Licuala | Arecaceae | Guadalupe | Peña et al. (33) |
| Musa acuminata Colla | Plátano | Musaceae | Santa Lucía Dominica | Kane et al. (27) |
| Musa balbisiana Colla | Plátano | Musaceae
Musaceae |
Santa Lucía Dominica |
Kane et al. (27) Anónimo (2) |
| Musa uranoscopus Lour. | Plátano | Santa Lucía | ||
| Musa x paradisiaca L. | Plátano | Santa Lucía Dominica | ||
| Musa spp. | Plátano | Trinidad y Tobago | ||
| Ocimun lutescens L. | Sweet basil | Lamiaceae | Pakistán | Chaudhri et al. (5) |
| Ocimun basilicum L. | – | Lamiaceae | Santa Lucía | Kane et al. (27) |
| Ocimun basilicum L.
Phaseolus sp. |
–
Frijol |
Lamiaceae
Fabaceae |
Pakistán | Chaudhri et al. (5) |
| India | Gupta (16) | |||
| Phoenix dactylifera L. | Palma dátil | Arecaceae | Emiratos Árabes Unido | Gassouma (16) |
|
Phoenix dactylifera L.
Pricthardia pacifica B. C. Seem |
Palma dátil
Pritchardia |
Arecaceae
Arecaceae |
Arabia Saudita | Alhudaib (1) |
| Mauricio | Moutia (31) | |||
| Egipto | Sayet (47) | |||
| Sudán | Pritchard y Baker (35) | |||
| Pakistán | Chaudhri et al. (5) | |||
| Israel | Gerson (17) | |||
| Omán | Elwan (12) | |||
| Irán | Askari et al. (3) | |||
| Martinica | Fletchmann y Etienne (15) | |||
| Trinidad y Tobago | Anónimo (2) | |||
| Santa Lucía | Kane et al. (27) | |||
| Guadalupe | Peña et al. (33) | |||
| Pandanus sp. | Pandanus | Pandanaceae | Santa Lucía | Kane et al. (27) |
| Syagrus ramanzoffianum (Cham.) | Coco plumoso | Arecaceae | Santa Lucía | Kane et al. (27)
Fletchmann y Etienne (15) |
| Syagrus ramanzoffianum (Cham.)
Strentzia regianae Banks |
Coco plumoso
– |
Arecaceae
Stretlitziaceae |
Martinica | |
| Guadalupe | Peña et al. (33) | |||
| Veichia merrillil (Becc.) | Adonidia | Arecaceae | Santa Lucía | Kane et al. (27) |
| Veichia merrillil (Becc.)
Washingtonia robusta H. Wendl. |
Adonidia
Washintonia |
Arecaceae
Arecaceae |
Martinica | Fletchmann y Etienne (15) |
| Trinidad y Tobago | Anónimo (2) | |||
| Puerto Rico | Rodrigues (43) | |||
| Guadalupe | Peña et al. (33) |
Daños.
Las plantas jóvenes son más severamente atacadas, pero los daños son más evidentes en las hojas viejas, las cuales se tornan amarillentas y pueden llegar a secarse completamente. Las pérdidas mayores se observan en la fase de vi vero donde, cuando las poblaciones son altas, pueden causar la muerte de las plantas.
Los ácaros rojizos son fácilmente observables sobre las hojas verdes. Las altas poblaciones de ácaros se localizan típicamente en el envés de las hojas y pueden aparecer en ellas puntos amarillos esparcidos sobre ambas superficies hasta provocar una fuerte coloración amarilla generalizada en toda la hoja. Las afectaciones mayores se localizan en la parte media de los foliolos. Los cocoteros severamente afectados por el ácaro presentan hojas completamente amarillas, particularmente sobre el tercio inferior de las plantas. Al color amarillo de las hojas, le sigue el aborto de las flores y la disminución del tamaño de las copras. Las plantas jóvenes de cocotero pueden ser más afectadas por la alimentación del ácaro.
Se pueden encontrar poblaciones formando grupos que varían en número de 20 a 300 individuos, considerando las diferentes fases del ácaro. Al comparar hojas con diferentes niveles de infestación se puede observar el patrón de progreso del daño ocasionado por la alimentación del ácaro. Los síntomas en foliolos de cocotero inicialmente se caracterizan por manchas pálidas y amarillas en la parte inferior. Posteriormente, a medida que continúa la alimentación del ácaro, la mancha adquiere un aspecto clorótico.
El daño causado por el proceso de alimentación en los dos lados de la nervadura del foliolo hace que este se doble, mientras los ácaros permanecen protegidos en el interior del foliolo doblado. La continua infestación y alimentación en esta zona del foliolo provocan la curvatura de las hojas y eventualmente las puntas se secan. Con el desarrollo de la infestación, la apariencia general de la planta y de las hojas pasa de un color verde brillante a un aspecto pálido y finalmente pardo del foliolo.
En palmas en vivero, la infestación parece comenzar en la punta de la hoja de la palma que tiene todavía sus foliolos juntos. En palmas adultas, la mayor población se encuentra en el área central de los foliolos. El daño de este ácaro se caracteriza por dejar unas manchas grasientas en el envés, luego sigue la necrosis. Las palmas afectadas tienen también un color bronceado o anaranjado a los seis meses de haber comenzado el ataque (Jorge E. Peña, 2007, comunicación personal)[1].
El amarillamiento intenso de las hojas inferiores puede ser indicio de la alimentación del ácaro de las palmeras o de otra plaga o enfermedad de las palmeras u de cualquier otra monocotiledónea arborescente y pone como ejemplo que el daño del ácaro, algunas veces ha sido confundido en el campo con el amarillamiento letal del cocotero ( LY, de sus siglas en inglés), una enfermedad altamente prevaleciente en el sudeste de la Florida y varios países de la cuenca del Caribe e indica que el síntoma clave para distinguir el daño del ácaro rojo del LY es la presencia de las densas poblaciones del ácaro, visibles a simple vistas en el envés del follaje. También la presencia de las exuvias de los ácaros puede ser utilizada.
A diferencia de otras especies de ácaros que afectan las células epidérmicas, R. indica se alimenta del mesófilo de las hojas, lo cual está relacionado con la magnitud de los daños que produce en las plantas infestadas (Ochoa, 2007), citado por Pons y Marion.
Sobre plátano y banano el envés de las hojas se torna amarillo, con pequeñas áreas verde-amarillas disparejas. En plantas de banano que se encontraban bajo los cocales, se ha podido contar hasta 200 ácaros/cm2.
La sintomatología que presentan generalmente las hojas se parece a una deficiencia de nutriente, lo cual se explica porque el ácaro se alimenta de las capas de tejido, ricas en nutrientes del mesófilo de la hojas, por lo que el amarillamiento resultante es diferente al que se produce cuando los ácaros se alimentan de las células epidérmicas.
Según Ochoa (2007) citado por Pons y Marion (34) la rápida propagación de esta plaga, la cual causa serios daños a las hojas de los cultivos donde se alimenta, constituye la explosión más grande de la población de un ácaro que ha sido observada en las Américas. En Trinidad y Tobago, se han estimado que Características morfológicas distintivas.
Las especies de Raoiella tienen solo dos segmentos palpales y el escudo propodosomal no se proyecta por encima del rostrum. Tienen cuatro pares de setas histerosomales dorsosublaterales. La hembra no tiene el escudo ventral anterior y el cuerpo es fuertemente redondeado.
El cuerpo de R. indica no tiene estrías. El primer par de setas histerosomales dorsocentrales son mayores que las otras. El cuarto par de setas dorsosublaterales son más cortas que el primer par. Todas las setas dorsales son clavadas y aserradas.
Según Chaudhri et al. (5) los tres pares de setas propodosomales miden 70 µm, 91 µm y 60 µm de largo, el par de seta humeral 94 µm. El histerosoma tiene tres pares de setas centrales de 47 µm, 36 µm y 26 µm. Los cuatro pares de setas sublaterales miden 44 µm, 42 µm, 42 µm y 36 µm; mientras que las setas laterales tienen una longitud de 96 µm, 96 µm, 57 µm y 52 µm.
Características biológicas.
El ciclo biológico de R. indica consta de las fases de: huevo, larva, protoninfa, deutoninfa y adulto. El huevo recién puesto se adhiere a la superficie de la hoja y presenta en el extremo libre una estructura propio huevo. El extremo del filamento se enrolla y puede tener una gota de agua adherida. Nageshachandra y Channabasavanna describe dicha estructura como un filamento fino, de forma espiralada y con un ápice clavado, con una longitud de 170 a 210 µm. Próximos a la eclosión, los huevos adquieren una coloración blanco opaca.
Las larvas poseen tres pares de patas, son rojizas y de movimientos lentos. Se alimentan generalmente por un periodo de 3-5 días, antes de comenzar el estado quiescente, que demora entre 1-2 días. Producto de la alimentación pueden desarrollar unas manchas negruzcas en la parte dorsal posterior del cuerpo. El cuerpo es ovalado y pueden medir de 120 a 160 µm de largo y de 100 a 120 µm de ancho.
La protoninfa es de color rojizo y emerge de la exuvia con cuatro pares de patas, se alimenta por espacio de 2 a 5 días antes de comenzar el periodo quiescente, el cual demora de 1 a 4 días. Son de mayor tamaño que las larvas, con 180 a 200 µm de largo y 130 a 140 µm de ancho.
A la protonifa le sigue la deutoninfa, la cual se parece a la fase precedente, aunque son de mayor tamaño. La fase activa dura 2 a 5 días y la quiescente de 2 a 4 días. Las deutoninfas miden de 240 a 250 µm de largo por 160 a 170 µm de ancho.
Las hembra de R. indica tiene el cuerpo de forma oval, de color rojizo, con manchas oscuras sobre la parte dorsal del cuerpo producto de la alimentación. La superficie dorsal es lisa, excepto por la presencia de unas depresiones puntuales (21) (Fig. 7). El cuerpo mide de 250 a 320 µm de largo por 190 a 290 µm de ancho (32).
Los machos son de menor tamaño, su cuerpo puede medir de 220 a 230 µm de largo por 140 a 150 µm de ancho. Tienen la parte posterior del cuerpo más aguzada y son más activos que las hembras. Presentan una aedeagus largo y afilado.
Los machos y las hembras están sexualmente maduros cuando emergen y los machos buscan activamente a las hembras, lo cual sugiere la existencia de una feromona sexual. Cuando los machos localizan a una deutoninfa hembra en fase quiescente, suelen quedarse cerca de la misma y esperar hasta dos días a que se produzca la muda para copular a la hembra.
El ciclo de desarrollo de huevo a adulto generalmente requiere de 23 a 28 días para las hembras y de 20 a 22 días para los machos. Estos valores pueden variar en dependencia de las condiciones ambientales.
- indica presenta reproducción sexual y por partenogénesis arrenotóquica, donde los óvulos no fecundados producen solo machos; mientras que los fecundados producen progenie hembra (30). Una hembra puede poner de 1 a 6 huevos diarios, con un promedio de 2 huevos/hembra/día. La fecundidad total puede ser de 27 a 162 huevos/hembra. Según Nageshachandra y Channabasavanna las hembras fecundadas ovipositan una media de 22 huevos; mientras que las hembras vírgenes tienen una media de 18.4 huevos.
Comportamiento poblacional.
Los niveles poblacionales de R. indica están influenciados fundamentalmente por la humedad relativa, las temperaturas y el fotoperiodo. El aumento de la población está relacionado con periodos de baja humedad relativa, altas temperaturas y días largos.
Los estudios de fluctuación poblacional realizados indican que las precipitaciones y la humedad relativa tienen una correlación negativa con la población del ácaro rojo de las palmeras; mientras que la temperatura y las horas de sol muestran una correlación positiva.
En Mauricio, R. indica es generalmente abundante sobre cocotero de septiembre a marzo, excepto cuando ocurren intensas lluvias en el periodo comprendido entre noviembre y enero. A inicios de abril normalmente disminuye su población, la cual se mantiene baja hasta agosto.
En Santa Lucía, se observó la presencia del ácaro rojo de las palmares a través de toda la isla, desde el nivel del mar hasta las mayores elevaciones. Las densidades poblaciones mayores están localizadas en el envés, con colonias de 20 – 300 individuos. Las colonias están compuestas fundamentalmente por huevos y estadios inmaduros (larvas, protoninfas y deutoninfas).
Este ácaro se dispersa por las corrientes de aire y el traslado de material infestado (50). Kane et al. (27) consideraron que la hembra adulta es importante en la dispersión de la especie. La fecundación se produce al final del proceso de muda e inmediatamente la hembra se dispersa para garantizar su habilidad para fundar una nueva colonia. Esta hipótesis la basaron en la observación de colonias con un bajo número de hembras, de un lado, y el hallazgo de hembra aisladas rodeadas de 20 – 30 huevos.
Control
El control de R. indica se ha realizado básicamente a través de productos químicos. Los estudios de variedades resistentes son incipientes y los enemigos naturales han demostrado ser una alternativa promisoria.
Control químico
El control químico es costoso y difícil cuando las palmas son muy altas, sin embargo, en ocasiones es necesario su uso para controlar las altas poblaciones de ácaros en viveros, donde no existe un adecuado nivel poblacional de los enemigos naturales.
Una de las estrategias más usadas es realizar aplicaciones foliares de acaricidas en viveros o plantaciones jóvenes e inyectar la base del tallo o las raíces de las plantas adultas.
TABLA 2. Enemigos naturales asociados a Raoiella indica./ Natural enemies associated to Raoiella indica
| Nombre Científico | Orden | Familia | País | Autor |
| Typhlodromus caudatus Chant | Parasitiformes | Phytoseiidae | Islas
Mauricio |
Moutia (31) |
| Oligota sp. | Coleoptera | Staphylinidae | India | Somchoudhury y
Sorka (1987). Citado por Mendonça et al. (29) |
| Phytoseius sp. | Parasitiformes | Phytoseiidae | ||
| Amblyseius sp. | Parasitiformes | Phytoseiidae | ||
| Amblyseius channabasavannai Gupta y Daniel | Parasitiformes | Phytoseiidae | India | Daniel (9) |
| Stethorus keralicus Kapur | Coleoptera | Coccinellidae | ||
| Amblyseius longispinosus Evans | Parasitiformes | Phytoseiidae | India | Gupta (19) |
| Stethorus parcempunctatus
Puttarudrian y Channabasavanna |
Coleoptera | Coccinellidae | ||
| Stethorus tetranychi Kapur | Coleoptera | Coccinellidae | ||
| Jauravia sp. | Coleoptera | Coccinellidae | ||
| Amblyseius raoiellis Denmark y
Muma |
Parasitiformes | Phytoseiidae | India | Denmark y Muma
(11) |
| Amblyseius largoensis (Muma) | Parasitiformes | Phytoseiidae | Filipinas Caribe | CPC (8)
Ueckermann (49) Peña et al. (33) |
| Armasirus tauro (Kraemer) | Acariformes | Cunaxidae | ||
| Telsimia ephippiger Chapin | Coleoptera | Coccinellidae | ||
| Typhlodromips tetranychivorus Gupta | Parasitiformes | Phytoseiidae | Hoy et al. (21) |
Se han evaluado diversos productos químicos con niveles de efectividad variables y que en sentido general, no sobrepasan el 80 % de eficiencia. La mayoría de estas investigaciones se han realizado en India y otros países asiáticos, por lo que pudieran no ser aplicables en el Caribe.
Los productos químicos que han mostrado una mayor efectividad han sido: Monocrotophus (0.03% i.a.), Dimethoato 30 CE (0.03% i.a.), Phosphamidon 85 WSC, Methomyl 25 CE (0.005%), Ethion (0.1%), Phosalone (0.007%) [Jalaluddin y Mohanasundaran (1990), citado por Mendonça et al.].
Para la India se ha recomendado el uso racional de los insecticidas químicos debido a que se ha observado que las aplicaciones excesivas han provocado el aumento de las poblaciones del ácaro rojo de las palmeras y con ello se pretende preservar a los ácaros e insectos depredadores.
Cuando no están presentes los enemigos naturales se recomienda realizar aplicaciones con Enxone PM (2.5-3 g.L-1, 10001500 g i.a.ha-1), Dicofol (2.5 mL.L-1, 300-350 g i.a.ha1 o Profenophos (0.5 mL.L-1, 175-200 g i.a.ha-1).
Control biológico.
En los países donde R. indica se ha estudiado con mayor profundidad, India, Mauricio y Egipto, se han encontrado asociado a la misma un grupo de enemigos naturales. En la Tabla 2 se relacionan las especies informadas.
De las especies señaladas en la tabla anterior con A. channabasavannai y T. caudatus se han realizado estudios biológicos, que evidencian que pueden considerarse como depredadores potencialmente eficientes de R. indica.
En el caso de los insectos depredadores del género Stethorus, aunque son depredadores muy voraces, que frecuentemente se encuentran en asociación con diferentes especies de fitoácaros, requieren altas densidades de presa para mantener el crecimiento de su población, por lo que generalmente, llegan al cultivo cuando existen altos niveles poblacionales de la plaga y el daño es irreversible.
En general se han realizado pocos estudios para conocer cuáles de las especies de depredadores comúnmente encontradas junta a R. indica son realmente enemigos naturales efectivos.
De las especies que están señaladas en asociación con R. indica, solo A. largoensis está registrado en Cuba. Este fitoseidos es uno de los más distribuidos en el país y está informado en el cultivo del cocotero en la zona occidental del país. En la zona oriental, área donde se concentra la mayor producción nacional, se ha detectado la presencia de Amblyseius lula (Pritchard y Baker), en el cocotero.
En Cuba se ha demostrado que A. largoensis es un agente de control biológico efectivo del Polyphagotarsonemus latus (Banks) (Acari: Tarsonemidae). Entre los atributos más significativos de este depredador frente al ácaro blanco se encuentran: su corto ciclo de desarrollo, alta fecundidad, elevada capacidad de búsqueda y su respuesta funcional de tipo II, la cual le permite responder adecuadamente frente a altas densidades de presa. Adicionalmente, por sus hábitos generalistas puede alimentarse de pequeños insectos. Para esta especie se han evaluado diferentes métodos de cría, que en su mayoría han permitido el establecimiento del cultivo puro, el mantenimiento del pie de cría, incluyendo el control de su calidad y la producción de pequeñas cantidades para la evaluación de su efectividad en condiciones semicontroladas. Por estas características, pudiera ser considerado como uno de los primeros candidatos a evaluar entre los fitoseidos autóctonos, para el manejo de R. indica.
Discusión.
La rápida diseminación de R. indica en la cuenca del Caribe y su detección en nuevas plantas hospedantes, hacen de este ácaro una seria amenaza para la región. Las características biológicas de esta especie, las condiciones climáticas prevalecientes en Cuba y la posibilidad de que este ácaro encuentre hospedantes adecuados a todo lo largo y ancho del país, apoyan la idea de que R. indica constituye un riesgo potencial para el país.
Si se considera que una de las vías fundamentales que utiliza este ácaro para dispersarse es el viento y que el mismo ha sido registrado en países tan cercanos a Cuba como República Dominicana y Jamaica, se comprenderá la real amenaza que constituye esta especie para el país y otras naciones de la región. A esto hay que agregarle la ocurrencia de fenómenos atmosféricos extremos, como los ciclones tropicales, que pudieran favorecer su dispersión. Por medio de la actividad humana también pudiera eventualmente dispersarse R. indica a través de la zona tropical y subtropical de las Américas, por lo que se considera que las palmas, que son un símbolo del clima tropical, así como la multimillonaria industria de los viveros de palmas, están en riesgo.
Es importante recordar que Stenotarsonemus spinki Smiley (Acari: Tarsonemidae), informado en Cuba en 1998 tuvo una rápida dispersión hacia otras islas del Caribe y varios países de América Central, a pesar de ser una especie específica del cultivo del arroz (Oryza sativa L.) y tener su hábitat preferencial en el interior de la vaina de la hoja de la planta de arroz. Esto evidencia que los ácaros tienen un alto potencial de éxito como especies exóticas invasoras.
En enero de 2007 la Oficina de Vigilancia Fitosanitaria perteneciente al Centro Nacional de Sanidad Vegetal (CNSV, Cuidad de La Habana, Cuba) publicó una Comunicación de Riesgo, donde informa las características fundamentales de esta plaga, con vistas a la actualización del personal del sistema de sanidad vegetal del país, relacionado con la vigilancia fitosanitaria.
La detección en Cuba de esta especie pudiera significar un reto para el sistema de sanidad vegetal, por tratarse de una especie que afecta un grupo de cultivos o plantas donde, de forma tradicional, no se realizan aplicaciones de productos químicos para el control de plagas.
Entre los cultivos más amenazados se puede señalar el cocotero, el cual está distribuido por toda Cuba, aunque su producción se concentra principalmente en la provincia Guantánamo, donde se obtiene el 80 % de la producción total del país. Este territorio por su ubicación geográfica, en el extremo oriental del país, es el más cercano a los posibles focos de introducción a través de las corrientes de aire.
Una situación no menos alarmante pudiera enfrentar el sector del turismo, el cual vería dañada muchas de las plantas ornamentales que embellecen la instalaciones turísticas, así como otras especies de significativo valor emblemático, cultural y socioambiental para Cuba, como la Palma Real (Roystonea regia O.F. Cook), la cual es reconocida por los cubanos, entre los más de 80 tipos diferentes de palmas autóctonas, como la reina de los campos, por la majestuosidad de su estructura, por su peculiar talla, la utilidad que reporta y por ser, además, el más numeroso de los árboles de la Isla.
Por las posibles afectaciones que pueda causar a nuestros agroecosistemas y ecosistemas naturales, resulta imprescindible que se adopten un grupo de acciones emergentes para evitar la entrada de R. indica al país o lograr su detección temprana con el propósito de evitar su diseminación e intentar acciones de erradicación. Entre estas acciones es de vital importancia realizar un análisis de riesgo de introducción, intensificar las inspecciones a los puntos vulnerables y perfeccionar las estrategias muestreo para todo el país, así como diseñar una estrategia de mitigación de impacto ante su posible introducción.
Fuentes:
- Biología de Raoiella indica hirst (acari: tenuipalpidae) sobre Areca Catechu L.; Autores: G. Flores-Galano, A. Montoya, H. Rodríguez.http://scielo.sld.cu/ (Consultado el 21/11/2017).
- Raoiella indica hirst (acari: tenuipalpidae): una amenaza para cuba; H. Rodríguez, A. Montoya y Mayra Ramos. Sitio:http://scielo.sld.cu/ (Consultado el 21/11/2017).
[1] Dr. Jorge E. Peña. Universidad de la Florida. Estados Unidos.